1. 原理

    免疫熒光技術(shù)是根據(jù)抗原抗體反應(yīng)的原理，先將已知的抗原或抗體標(biāo)記上熒光素，再用這種熒光抗體（或抗原）作為探針檢查細(xì)胞內(nèi)的相應(yīng)抗原（或抗體）。在細(xì)胞中形成的抗原抗體復(fù)合物上含有標(biāo)記的熒光素，熒光素受激發(fā)光的照射，由低能態(tài)進(jìn)入高能態(tài)，而高能態(tài)的電子是不穩(wěn)定的，以輻射光量子的形式釋放能量后，再回到原來(lái)的低能態(tài)，這時(shí)發(fā)出明亮的熒光，利用熒光顯微鏡可以看見(jiàn)熒光所在的細(xì)胞，從而確定抗原或抗體的性質(zhì)和定位，以及利用定量技術(shù)測(cè)定含量。免疫熒光技術(shù)分直接法、間接法和補(bǔ)體法，zui常見(jiàn)的為間接法。

    在同一細(xì)胞標(biāo)本上需要同時(shí)檢測(cè)兩種抗原時(shí)，需進(jìn)行雙重?zé)晒馊旧?，稱為免疫熒光雙標(biāo)。用未標(biāo)記的兩種特異性*抗體孵育細(xì)胞，洗去多余的*抗體后，再用兩種不同的熒光素分別標(biāo)記的第二抗體孵育細(xì)胞，洗去多余的第二抗體，后在熒光顯微鏡下分別選擇兩種相應(yīng)的激發(fā)濾片觀察，從而對(duì)兩種抗原進(jìn)行定位和定量。使用此法應(yīng)注意兩種特異性*抗體必須來(lái)源于不同種屬，且熒光標(biāo)記第二抗體的種屬必須與*抗體的種屬相匹配。

2. 實(shí)驗(yàn)步驟

（1）在培養(yǎng)板中將已爬好細(xì)胞的玻片用PBS浸洗3次，每次3 min；
（2）用4%的多聚甲醛固定爬片15 min， PBS浸洗玻片3次，每次3 min；
（3）用0.5%Triton X-100（PBS配制）室溫通透20 min（細(xì)胞膜上表達(dá)的抗原省略此步驟）；
（4）PBS浸洗玻片3次，每次3 min；

（5）在玻片上滴加正常山羊血清，室溫封閉30 min；
（6）吸水紙吸掉封閉液，不洗，同時(shí)滴加兩種一抗混合液并放入濕盒，4℃孵育過(guò)夜；
（7）PBST浸洗爬片3次，每次5 min，吸水紙吸干爬片上多余液體后滴加稀釋好的熒光二抗混合液，濕盒中20－37℃孵育1 h；

（8）PBST浸洗爬片3次，每次5 min；

（9）滴加DAPI避光孵育5 min，對(duì)標(biāo)本進(jìn)行復(fù)染核，PBST、5 min×4次洗去多余的DAPI；（10）用吸水紙吸干爬片上的液體，用含抗熒光淬滅劑的封片液封片；

（11）在熒光顯微鏡下觀察。

3. 注意事項(xiàng)

（1）兩種一抗要來(lái)源于兩種不同的動(dòng)物；

（2）二抗用兩種不同熒光信號(hào)標(biāo)記，且各自信號(hào)相互不干擾或干擾性?。?/p>

（3）熒光染色后一般在1 h內(nèi)完成觀察，或于4℃保存4 h，時(shí)間過(guò)長(zhǎng)，會(huì)使熒光減弱；
（4）每次試驗(yàn)時(shí)，需設(shè)置以下三種對(duì)照：

     陽(yáng)性對(duì)照：陽(yáng)性血清+熒光標(biāo)記物
     陰性對(duì)照：陰性血清+熒光標(biāo)記物
     熒光標(biāo)記物對(duì)照：PBS+熒光標(biāo)記物；

（5）抗體濃度和孵育時(shí)間需要事先摸索。

注意事項(xiàng)： 

1.新鮮組織固定于4%多聚甲醛24h以上； 

2.取材切面要平整，厚度不宜超過(guò)2mm； 

3.請(qǐng)明確拍照部位及拍照倍數(shù)(一般為40X、100X、200X、400X)。