熒光定量PCR——想要實驗結(jié)果可靠,各種對照不可少
怎么整板都沒有擴(kuò)增曲線,是哪一步實驗出問題了嗎?
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在您看到熒光定量PCR結(jié)果的時候是否也有過這樣的疑問?隱隱約約感覺實驗?zāi)硞€步驟出現(xiàn)問題,卻又不知該從何下手。別擔(dān)心,有“對照精靈”們來助您一臂之力。
熒光定量PCR實驗,從樣本采集到結(jié)果分析包含多個實驗步驟,針對不同的步驟,可以選擇不同的對照對流程進(jìn)行監(jiān)控(圖1)。
圖1. 實驗流程和常見陰陽性對照種類。
陰性對照
陰性樣本指不含有目的基因或者靶序列的樣本,也可以是樣本保存液。從核酸提取開始做起,經(jīng)歷提取、逆轉(zhuǎn)錄(如有)和擴(kuò)增過程。如果出現(xiàn)擴(kuò)增,則說明其中某一實驗步驟中存在污染,結(jié)合NTC結(jié)果,可以判斷是否是樣本提取過程中引入的污染。
可使用含有擴(kuò)增片段的質(zhì)粒、假病毒或者基因組DNA/cDNA作為擴(kuò)增陽性對照,監(jiān)控?zé)晒舛縋CR的體系是否正常,包括酶、引物、探針等。如果檢測中包含多個目標(biāo)片段,可以將這些目標(biāo)片段都克隆到同一個質(zhì)粒中,方便制備和使用。當(dāng)擴(kuò)增對照沒有擴(kuò)增,或者Ct值大于預(yù)期,則說明定量PCR體系存在問題。
表1:陽性內(nèi)對照和相關(guān)試劑盒
圖2:通過IPC提示體系中抑制劑的存在。實驗結(jié)果為同樣濃度的RNA加入相同拷貝Xeno IPC,在不同濃度的擴(kuò)增抑制劑血紅素存在下(0-4μM),Xeno IPC的Ct值與目標(biāo)RNA的Ct值定量結(jié)果。
上面提到的陽性對照能夠為實驗流程提供很多質(zhì)控信息。對于樣本本身的質(zhì)量,比如拭子是否刮取到樣本、RNA在運(yùn)輸和保存過程中是否有嚴(yán)重的降解等問題,則可以通過對內(nèi)參基因的定量來幫助回答。
內(nèi)參基因一般選擇在取樣組織或細(xì)胞中均有足量表達(dá)的基因,且其表達(dá)量不受環(huán)境、實驗處理條件和取樣時間等因素影響, 如管家基因(housekeeping gene)。常用人類內(nèi)參基因如表2所示。要注意沒有某個內(nèi)參基因是萬能的,需要根據(jù)樣本類型和實驗處理方式進(jìn)行評估和選擇(可參考Application Note: Using TaqMan Endogenous Control Assays to select an endogenous control)。實驗中通過內(nèi)參基因的Ct值來判斷取樣和樣本降解情況。在相對定量實驗中,內(nèi)參基因亦可用于對取樣量進(jìn)行均一化。
如果進(jìn)行的是單管多重實驗,還需考慮內(nèi)參基因的表達(dá)量。當(dāng)內(nèi)參基因表達(dá)量遠(yuǎn)高于目的基因時,內(nèi)參基因?qū)?yōu)勢擴(kuò)增,體系中的原料消耗速度過快,造成目的基因擴(kuò)增效率降低。此時可以選擇引物濃度降低的TaqMan試劑盒(Primer-Limited)對內(nèi)參基因進(jìn)行測定。
表2:常用人類內(nèi)參基因試劑盒(cDNA)
如何避免污染發(fā)生?出現(xiàn)污染怎么辦?
樣本間的交叉污染
實驗室設(shè)備的污染
對于核酸提取儀、實驗臺面、超凈臺等可在實驗結(jié)束后用70%的乙醇或者10%的次氯酸鈉(具腐蝕性,建議使用前咨詢設(shè)備供應(yīng)商)擦拭或者利用紫外線照射5-20分鐘進(jìn)行表面清潔。如果需要對殘留的核酸進(jìn)行更*的清潔, DNAZap™ PCR DNA Degradation Solutions能更有針對性地降解儀器和臺面上殘留的DNA和RNA。
試劑組分的污染
前次PCR擴(kuò)增產(chǎn)物和引物殘余污染
相關(guān)產(chǎn)品
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