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熒光定量PCR——想要實驗結(jié)果可靠,各種對照不可少

來源:7500熒光定量PCR儀維修服務(wù)中心   2021年06月01日 13:22  

 

怎么整板都沒有擴(kuò)增曲線,是哪一步實驗出問題了嗎?

 

 

這個病原體這段時間怎么經(jīng)常檢出?不會是有污染了吧?

 

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在您看到熒光定量PCR結(jié)果的時候是否也有過這樣的疑問?隱隱約約感覺實驗?zāi)硞€步驟出現(xiàn)問題,卻又不知該從何下手。別擔(dān)心,有“對照精靈”們來助您一臂之力。

 

熒光定量PCR實驗,從樣本采集到結(jié)果分析包含多個實驗步驟,針對不同的步驟,可以選擇不同的對照對流程進(jìn)行監(jiān)控(圖1)。

 

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圖1. 實驗流程和常見陰陽性對照種類。

 

陰性對照

 
熒光定量PCR的靈敏度可以達(dá)到1拷貝/孔,如此高靈敏度的檢測手段對實驗過程中的污染也非常敏感,我們也無法從單一孔中的擴(kuò)增曲線來判斷是否來源于污染還是來源于真實樣本的擴(kuò)增。這時,就需要陰性對照來監(jiān)控和發(fā)現(xiàn)污染的發(fā)生。常用的陰性對照包括以下幾種:

 

無模板對照
No Template Control, NTC

 

使用水代替定量PCR反應(yīng)中的核酸,其它試劑照常加入,用于監(jiān)控擴(kuò)增反應(yīng)體系中的污染。正常情況下,NTC孔不會有擴(kuò)增;當(dāng)NTC出現(xiàn)擴(kuò)增,則預(yù)示體系中有污染。在SYBR Green實驗中,NTC出現(xiàn)擴(kuò)增也可能是來源于引物二聚體的形成,此時則需要通過優(yōu)化引物的設(shè)計來減少引物二聚體對結(jié)果的影響。

 

無逆轉(zhuǎn)錄酶對照
No Reverse-Transcriptase Control, No RT 

 

當(dāng)進(jìn)行RNA定量實驗時,如果引物和探針設(shè)計在同一個外顯子上,就無法從結(jié)果中判斷擴(kuò)增是否來源于未去除干凈的DNA,從而影響定量結(jié)果的準(zhǔn)確性。除了在引物和探針設(shè)計上面下功夫,還可以設(shè)置無逆轉(zhuǎn)錄酶對照。即在逆轉(zhuǎn)錄實驗時,不加逆轉(zhuǎn)錄酶,并進(jìn)行后續(xù)的定量PCR檢測。無逆轉(zhuǎn)錄對照中由于沒有cDNA,DNA聚合酶無法擴(kuò)增mRNA,則不應(yīng)發(fā)生擴(kuò)增。如果檢測到擴(kuò)增,則樣本中可能含有未去除干凈的DNA。
 
陰性樣本對照
Negative Sample Control
 

陰性樣本指不含有目的基因或者靶序列的樣本,也可以是樣本保存液。從核酸提取開始做起,經(jīng)歷提取、逆轉(zhuǎn)錄(如有)和擴(kuò)增過程。如果出現(xiàn)擴(kuò)增,則說明其中某一實驗步驟中存在污染,結(jié)合NTC結(jié)果,可以判斷是否是樣本提取過程中引入的污染。

 

 

  陽性對照  
 
熒光定量PCR實驗從樣本采集到最后的結(jié)果分析分為幾個步驟完成,任何一個環(huán)節(jié)出現(xiàn)問題,都會對結(jié)果產(chǎn)生影響。當(dāng)出現(xiàn)一個無擴(kuò)增或者Ct值偏大的樣本孔,到底是真的沒有要檢測的對象,還是擴(kuò)增有問題,亦或是提取中的問題?為了發(fā)現(xiàn)這種假陰性的發(fā)生,合理的陽性對照可以監(jiān)控實驗的不同步驟:

 

擴(kuò)增對照
Amplification Control

 

可使用含有擴(kuò)增片段的質(zhì)粒、假病毒或者基因組DNA/cDNA作為擴(kuò)增陽性對照,監(jiān)控?zé)晒舛縋CR的體系是否正常,包括酶、引物、探針等。如果檢測中包含多個目標(biāo)片段,可以將這些目標(biāo)片段都克隆到同一個質(zhì)粒中,方便制備和使用。當(dāng)擴(kuò)增對照沒有擴(kuò)增,或者Ct值大于預(yù)期,則說明定量PCR體系存在問題。

 
內(nèi)部陽性對照
Internal Positive Control, IPC

 

如果想監(jiān)控每一份樣本從核酸提取到逆轉(zhuǎn)錄以及最后的熒光定量PCR的過程,可以在提取之前在每個樣本中加入一段外源DNA或RNA(不含目的片段)(表1),并在定量PCR時進(jìn)行單管多重PCR,同時檢測目的基因和這段序列。在每個樣本中加入特定拷貝數(shù)的IPC,進(jìn)而從該段序列的Ct值判斷對應(yīng)樣品孔中的核酸富集和擴(kuò)增效率。也可以選擇的逆轉(zhuǎn)錄或者擴(kuò)增的時候加入到每一個樣本孔中,單獨監(jiān)測純化后的核酸中是否含有逆轉(zhuǎn)錄/擴(kuò)增抑制劑(圖2)。
 

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表1:陽性內(nèi)對照和相關(guān)試劑盒

 

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圖2:通過IPC提示體系中抑制劑的存在。實驗結(jié)果為同樣濃度的RNA加入相同拷貝Xeno IPC,在不同濃度的擴(kuò)增抑制劑血紅素存在下(0-4μM),Xeno IPC的Ct值與目標(biāo)RNA的Ct值定量結(jié)果。

 

 

陽性樣本對照
Positive Sample Control

 

陽性內(nèi)對照雖然可以在一定程度上反應(yīng)核酸提取效率,但是卻很難反饋提取流程中對核酸釋放的效率。一些病原體的樣本,尤其是含有革蘭氏陽性菌或者真菌樣本,充分的酶消化或者機(jī)械裂解對于最終檢測的靈敏度有顯著影響。為了能更好的反映提取效率,可以選擇已知陽性的樣本或者保存在相似基質(zhì)中已知濃度的病原體,作為單獨的樣本進(jìn)行提取和后續(xù)的RT-PCR,通過Ct值評斷實驗流程。
 
內(nèi)參基因
Endogenous Control

 

上面提到的陽性對照能夠為實驗流程提供很多質(zhì)控信息。對于樣本本身的質(zhì)量,比如拭子是否刮取到樣本、RNA在運(yùn)輸和保存過程中是否有嚴(yán)重的降解等問題,則可以通過對內(nèi)參基因的定量來幫助回答。

 

內(nèi)參基因一般選擇在取樣組織或細(xì)胞中均有足量表達(dá)的基因,且其表達(dá)量不受環(huán)境、實驗處理條件和取樣時間等因素影響, 如管家基因(housekeeping gene)。常用人類內(nèi)參基因如表2所示。要注意沒有某個內(nèi)參基因是萬能的,需要根據(jù)樣本類型和實驗處理方式進(jìn)行評估和選擇(可參考Application Note: Using TaqMan Endogenous Control Assays to select an endogenous control)。實驗中通過內(nèi)參基因的Ct值來判斷取樣和樣本降解情況。在相對定量實驗中,內(nèi)參基因亦可用于對取樣量進(jìn)行均一化。

 

如果進(jìn)行的是單管多重實驗,還需考慮內(nèi)參基因的表達(dá)量。當(dāng)內(nèi)參基因表達(dá)量遠(yuǎn)高于目的基因時,內(nèi)參基因?qū)?yōu)勢擴(kuò)增,體系中的原料消耗速度過快,造成目的基因擴(kuò)增效率降低。此時可以選擇引物濃度降低的TaqMan試劑盒(Primer-Limited)對內(nèi)參基因進(jìn)行測定。

 

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表2:常用人類內(nèi)參基因試劑盒(cDNA)

 

 

 

 

 
 

如何避免污染發(fā)生?出現(xiàn)污染怎么辦?

 

  樣本間的交叉污染  

 

 

為了避免樣本之間的交叉污染,規(guī)范化的取樣和樣本保存非常重要。不同樣本移液時謹(jǐn)記更換槍頭,并盡量使用帶濾芯的槍頭;不同樣本盡量避免同時開蓋或劇烈震蕩樣本,也要避免反復(fù)吹吸導(dǎo)至的氣溶膠形成和擴(kuò)散。一旦發(fā)生樣本溢出,應(yīng)馬上進(jìn)行清污,降低對后續(xù)實驗造成的影響。

 

  實驗室設(shè)備的污染  

 

 

對于核酸提取儀、實驗臺面、超凈臺等可在實驗結(jié)束后用70%的乙醇或者10%的次氯酸鈉(具腐蝕性,建議使用前咨詢設(shè)備供應(yīng)商)擦拭或者利用紫外線照射5-20分鐘進(jìn)行表面清潔。如果需要對殘留的核酸進(jìn)行更*的清潔, DNAZap™ PCR DNA Degradation Solutions能更有針對性地降解儀器和臺面上殘留的DNA和RNA。

 

  試劑組分的污染  

 

 

按照標(biāo)準(zhǔn)PCR實驗室的分區(qū)要求,在清潔度最高的“試劑儲存和準(zhǔn)備區(qū)”進(jìn)行試劑的制備、分裝和預(yù)混液的制備。大包裝的qPCR試劑開封后進(jìn)行分裝,以減少反復(fù)凍融和吸取次數(shù)。在做多樣本PCR反應(yīng)時,先配制反應(yīng)混合液分裝至反應(yīng)管中,最后加入樣本核酸。避免同時開蓋,實現(xiàn)*閉管操作。實驗試劑應(yīng)與樣品和PCR產(chǎn)物分開保存,不應(yīng)放于同處。
 

  前次PCR擴(kuò)增產(chǎn)物和引物殘余污染  

 
標(biāo)準(zhǔn)的PCR實驗室分區(qū)通過“標(biāo)本制備區(qū)”和“擴(kuò)增區(qū)”分割開PCR體系配置和PCR擴(kuò)增實驗。如果不具備這樣的條件,首先要避免熒光定量PCR實驗結(jié)束之后開蓋,以防擴(kuò)增產(chǎn)物形成氣溶膠對后續(xù)實驗造成污染。少量意外開蓋不能避免時,可以使用含有UNG酶(uracil-N-glycoslyase, 尿嘧啶DNA糖基化酶)的擴(kuò)增預(yù)混液。如果在PCR反應(yīng)中以dUTP代替dTTP參入到PCR產(chǎn)物中,形成了含有dUTP的擴(kuò)增產(chǎn)物,UNG酶能選擇性斷裂單鏈和雙鏈 DNA 中 U 堿基的糖苷鍵, 降解 PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物,對于熱敏感性的UNG酶,50℃溫度即可失活,不影響本次擴(kuò)增片段。

 

通過以上介紹,相信大家已經(jīng)對不同的對照種類和用途有了足夠的了解,在實踐中還需要針對具體需求進(jìn)行選擇。合理的對照能讓我們及時發(fā)現(xiàn)熒光定量PCR實驗中的問題,而規(guī)范的操作流程和良好的實驗習(xí)慣才能在根源上避免這些問題的發(fā)生。雙劍合并才能放心地收獲實驗結(jié)果。
 

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