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?Tunel檢測的實驗步驟與注意事項

閱讀:1177      發(fā)布時間:2024-1-10
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TUNEL檢測是一種用于檢測細胞凋亡(程序性細胞死亡)的方法。細胞凋亡是一種重要的細胞生物學過程,它在多種生理和病理情況下發(fā)揮作用,包括發(fā)育、組織修復(fù)和免疫應(yīng)答等。那么你知道Tunel檢測的實驗步驟與注意事項嗎?讓我們一起來看看吧!

一、Tunel檢測的操作步驟

1. 脫蠟和組織復(fù)性

將組織在二甲苯中浸泡兩次,每次10-20分鐘。在100%乙醇中洗滌兩次,每次5分鐘。然后依次在95%,70%和50%乙醇中洗滌3分鐘。

2. PBS洗滌和蛋白酶處理

用200-500 µL PBS洗滌樣品兩次,每次5分鐘。排除組織中多余的PBS,并在20 µg/mL蛋白酶K溶液中孵育15分鐘。

3. TdT標記反應(yīng)緩沖液/反應(yīng)混合物孵育

配制TdT標記反應(yīng)緩沖液。向每個樣品中加入50 µL反應(yīng)混合物,并在濕盒中避光下37℃孵育2小時。

4. PBS洗滌和DAPI復(fù)染

在PBS中將樣品洗滌3次,每次5分鐘。通過在1×DAPI中孵育10分鐘對樣品進行復(fù)染。

5. 觀察和拍照

將樣品在PBS中洗滌3次,每次5分鐘。然后加入水性封固劑或防淬滅溶液,封住蓋玻片。最后使用熒光顯微鏡觀察,并進行熒光顯微鏡拍照觀察,紅色通道(Ex/Em=555 nm/565 nm)。

二、注意事項

1. 設(shè)立陽性和陰性細胞對照:

陽性組:用DNase酶處理,誘導細胞凋亡,使3'-OH末端暴露。每次實驗只需做一個陽性組。

陰性組:不加TdT酶,其余操作和實驗組相同。

實驗組:除了陽性組和陰性組,所有樣本均屬于實驗組。

2. 選擇固定液:

建議使用4%多聚甲醛(PBS)進行固定。不建議使用乙醇和甲醇作為固定液。不要選用含有甲醇的甲醛替代品,因為這會降低標記效率,使熒光觀察困難。

3. 貼壁細胞處理:

貼壁細胞在加藥誘導凋亡后,細胞狀態(tài)會發(fā)生改變,形態(tài)會皺縮邊緣,貼壁粘附力降低。在對這些細胞進行實驗染色時,需要小心操作,避免吹打造成細胞脫落。特別是在多次洗滌細胞時,操作要小心輕柔。

4. 避光操作和孵育:

熒光基團長期暴露在普通光照下,會發(fā)生嚴重淬滅。

在實驗操作中應(yīng)盡量避光操作和孵育,以保證熒光觀察效果。

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