使用方法
1.提取液制備: 每300 μl冷的蛋白提取液B中加入2 μl蛋白酶抑制劑; 每300 μl冷的蛋白提取液D中加入2 μl蛋白酶抑制劑混合物,混勻后置冰上備用。 【注】: ?根據(jù)需要處理的樣品數(shù)量準備蛋白提取液,蛋白酶抑制劑混合物不可以一次全部加入提取液。 ?加過蛋白酶抑制劑的提取液一周內(nèi)未使用完,再次使用前需要再次加入蛋白酶抑制劑。 ?以下步驟使用的蛋白提取液BD為此步驟添加了蛋白酶抑制劑的蛋白提取液。 2.取洗凈擦干后并去除葉梗和粗脈的200-500 mg植物組織樣本用刀盡可能剪碎,加入1 ml 提取液A后用勻漿機充分勻漿或者用勻漿器充分勻漿。 【注】: ?勻漿盡可能充分。至無明顯可見固體。 ?培養(yǎng)細胞直接收集細胞后用勻漿器勻漿即可,勻漿后加提取液A混勻后直接進 行以下步驟離心。 ?處理葉片等組織樣本如果沒有勻漿機,也可先加少量提取液A后用Dounce勻漿器充分勻漿后再加提取液A混勻。 3.將勻漿液用100 μm細胞篩過濾。 【注】: ?沒有細胞篩時可以不過濾,將勻漿液靜置1分鐘,待大的沒有破碎的組織塊自然沉降,吸取上清。 ?部分黏液較多的植物樣本可能難以吸取,可以將1ml吸頭的口剪掉一點再吸。 4.將濾液在1000×g條件下離心10分鐘,收集上清(I),收集沉淀(I)。 5.在沉淀(I)中加入200-300 μl提取液B,充分混勻。 6.置振蕩器振蕩30分鐘。 【注】: ?用振蕩器/搖床的較低轉(zhuǎn)速,保持液體有輕微晃動即可。 ?沒有低溫振蕩條件可以不振蕩,在2-8℃靜置,稍微延長處理時間,中間每隔幾分鐘用移液器吹打混勻。 7.在4℃,10000×g條件下離心10分鐘。 8.將上清吸入另一預(yù)冷的干凈離心管,即可得到核蛋白。 9.將上述蛋白提取物定量后分裝于-80℃冰箱保存?zhèn)溆没蛑苯佑糜谙掠螌嶒灐? 10.在第4步得到的上清(I)中加入10 μl提取液C,充分混勻。 【注】: ?添加試劑C時注意有效的加入,由于試劑C比較粘稠,可能會吸附在吸頭,沒有添加進去,氣溫較低時可以把吸頭和試劑C在37℃預(yù)熱一下。 ?添加時不要將吸頭伸入到冷的試劑A中,會導致試劑C凝固而出不來,在接近液面的地方沿著離心管壁加入,注意觀察是否有效加入。 ?加入后充分混勻。 11.在2-8℃振蕩30-40分鐘。 【注】: ?此步驟必須在2-8℃條件。 ?使用較低轉(zhuǎn)速保持提取液稍微晃動即可。 ?沒有振蕩條件可以不振蕩,置2-8℃靜置,稍微延遲處理時間,中間每隔幾分鐘用移液器吹打混勻。 12.在37℃水浴10分鐘。 13.在37℃下 1000×g離心3分鐘,此時溶液分為兩層,上層是胞漿蛋白部分,下層部分(II)是膜蛋白約為40-50 μl。 【注】: ?必需保證在37℃左右下離心,至少確保30℃以上。 ?無可控溫的離心機時,也可不離心,延長37℃水浴時間至溶液變澄清,分層明顯即可。 14.將上層小心吸入另一預(yù)冷的干凈離心管,即可得到胞漿蛋白。 15.用50-100 μl冰冷的提取液D溶解步驟12中的下層部分(II),即得膜蛋白。 【注】: ?膜蛋白比較難溶解,不能很快溶解混勻,可以在加入溶解液后稍微吹打混勻,然后置于4℃冰箱靜置至溶解。中途用移液器輕輕吹打混勻一次。靜置后取出再次用移液器稍微吹打混勻即可。 ?靜置直至管底透明膠狀物溶解。 16.將上述蛋白提取物定量后分裝于-80℃冰箱保存?zhèn)溆没蛑苯佑糜谙掠螌嶒灐?【注】: ?建議用BCA法進行蛋白定量。相關(guān)產(chǎn)品:BB-3401。 ?蛋白樣品-80℃存放一年沒有問題。注意不要被蛋白酶水解掉,不要被細菌污染。